高致病禽流感病毒H7亞型HP-H7熒光PCR試劑盒說明書

【產(chǎn)品名稱】

商品名稱：高致病性禽流感病毒 H7 亞型（HP-H7）核酸檢測試劑盒（熒光-PCR 法）

Name ：Highly Pathogenic Avian Influenza Virus subtype H7 Detection Kit (Real-Time PCR Method)

【包裝規(guī)格】48T/盒

【預(yù)期用途】

禽流感是由正粘病毒科流感病毒屬的 A 型流感病毒引起的一種禽類或人類感染的傳染病，分為非致病性、低致病性和高致病性三類[1]。高致病性禽流感是家禽的重要烈性 傳染病，發(fā)病率和病死率可高達(dá) 100％，對養(yǎng)禽業(yè)危害極大。H7 亞型禽流感因 HA 基因裂解位點的差異表現(xiàn)為高低致病性，及時檢測 H7 亞型流感致病性具有重要意義。

本試劑盒利用實時熒光 PCR 原理，檢測高致病 H7 亞型禽流感病毒，對高致病H7 亞型禽流感引起的流感的診斷有重要指導(dǎo)意義。

【檢驗原理】

本試劑盒根據(jù)高致病性H7 亞型禽流感HA 基因裂解位點設(shè)計特異性引物和探針， 在反應(yīng)體系中含高致病H7 亞型禽流感病毒基因組模板的情況下，PCR 反應(yīng)得以進(jìn)行并釋放熒光信號。利用儀器對 PCR 過程中相應(yīng)通道的信號強(qiáng)度進(jìn)行實時監(jiān)測和輸出， 實現(xiàn)檢測結(jié)果的定性、定量分析。

【試劑組成】

注：

1） 不同批號試劑不能混用。

2） 試劑盒內(nèi)各試劑組份足夠包裝規(guī)格所標(biāo)示的檢測次數(shù)。

【儲存條件及有效期】

-20℃±5℃，避光保存、運(yùn)輸、反復(fù)凍融次數(shù)不超過 5 次，有效期 12 個月。

【適用儀器】

ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。

【標(biāo)本采集】

病死或撲殺禽，取喉氣管、腦、胸肌、心肌和肺等組織；待檢活禽，用棉拭子取呼吸道分泌物或排泄物，置于 1mL 50%甘油生理鹽水中。

【保存和運(yùn)輸】

上述標(biāo)本短期內(nèi)可保存于-20℃，長期保存可置-70℃，但不能超過 6 個月，標(biāo)本運(yùn)送應(yīng)采用 2~8℃冰袋運(yùn)輸，嚴(yán)禁反復(fù)凍融。

【使用方法】

1. 樣品處理（樣本處理區(qū)）

1.1 樣本前處理

每份組織分別從 3 個不同的位置稱取樣品約 1g，手術(shù)剪剪碎混勻后取 0.5g 于研磨器中研磨，加入 1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)研磨，待勻漿后轉(zhuǎn)至 1.5mL 滅菌離心管中，8000rpm 離心 2min，取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中；棉拭子直接取 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中。

1.2 RNA 提取

推薦采用上海晅科生物科技有限公司生產(chǎn)的RNA 提取試劑盒（離心柱提取法），請按照試劑盒說明書進(jìn)行操作。

2. 試劑配制（試劑準(zhǔn)備區(qū)）

根據(jù)待檢測樣本總數(shù)，設(shè)所需要的 PCR 反應(yīng)管管數(shù)為 N(N=樣本數(shù)+1 管陰性對照+1 管陽性對照；樣品每滿7 份，多配制 1 份)，每測試反應(yīng)體系配制如下表：

將混合好的測試反應(yīng)液分裝到 PCR 反應(yīng)管中，21uL/管。

3. 加樣（樣本處理區(qū)）

將步驟 1 提取的 RNA、陽性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取 4μL，分別加入相應(yīng)的反應(yīng)管中，蓋好管蓋，混勻，短暫離心。

4. PCR 擴(kuò)增（核酸擴(kuò)增區(qū)）

4.1 將待檢測反應(yīng)管置于熒光定量 PCR 儀反應(yīng)槽內(nèi)；

4.2 設(shè)置好通道、樣品信息，反應(yīng)體系設(shè)置為 25μL；熒光通道選擇：

檢測通道（Reporter Dye）FAM， 淬滅通道（Quencher Dye）NONE，ABI 系列儀器請勿選擇ROX 參比熒光，選擇 None 即可。

4.3 推薦循環(huán)參數(shù)設(shè)置：

5. 結(jié)果分析判定

5.1 結(jié)果分析條件設(shè)定

設(shè)置 Baseline 和 Threshold：一般直接按機(jī)器自動分析的結(jié)果分析，當(dāng)曲線出現(xiàn)整體傾斜時，根據(jù)分析后圖像調(diào)節(jié) Baseline 的start 值(一般可在 3~15 范圍內(nèi)調(diào)節(jié))、

stop 值(一般可在 5~20 范圍內(nèi)調(diào)節(jié))，以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動閾值線至高于陰性對照)，重新分析結(jié)果。

5.2 結(jié)果判斷

陽性：檢測通道 Ct 值≤35.0，且曲線有明顯的指數(shù)增長曲線。

可疑：檢測通道 Ct 值>35.0，且出現(xiàn)典型擴(kuò)增曲線的樣本建議重復(fù)試驗，重復(fù)試驗結(jié)果出現(xiàn) Ct 值≤35.0和明顯擴(kuò)增曲線者為陽性，否則為陰性。

陰性：樣本檢測結(jié)果無 Ct 值且無明顯的擴(kuò)增曲線。

6. 檢測方法的局限性

Ø 樣本檢測結(jié)果不樣本收集、處理、運(yùn)送以及保存質(zhì)量有關(guān)；

Ø 樣本提取過程中沒有控制好交叉污染，會出現(xiàn)假陽性結(jié)果；

Ø 陽性對照、擴(kuò)增產(chǎn)物泄漏，會導(dǎo)致假陽性結(jié)果；

Ø 病原體在流行過程中基因突變、重組，會導(dǎo)致假陰性結(jié)果；

Ø 不同的提取方法存在提取效率差異，會導(dǎo)致假陰性結(jié)果；

Ø 試劑運(yùn)輸，保存不當(dāng)或試劑配制不準(zhǔn)確引起的試劑檢測效能下降，出現(xiàn)假陰性或定量檢測不準(zhǔn)確的結(jié)果。

7. 質(zhì)控標(biāo)準(zhǔn)

陰性質(zhì)控品：無明顯擴(kuò)增曲線且無 Ct 值顯示；

陽性質(zhì)控品：擴(kuò)增曲線有明顯指數(shù)生長期，且 Ct 值≤32； 以上條件應(yīng)同時滿足，否則實驗視為無效。

【注意事項】

Ø 所有操作嚴(yán)格按照說明書進(jìn)行；

Ø 試劑盒內(nèi)各種組分使用前應(yīng)自然融化，*混勻并短暫離心；

Ø 反應(yīng)液應(yīng)避光保存；

Ø 反應(yīng)中盡量避免氣泡存在，管蓋需蓋緊；

Ø 使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)與用工作服；

Ø 樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進(jìn)行，以免交叉污染；

Ø 實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器；

Ø 試劑盒里所有物品應(yīng)視為污染物對待，并按照《微生物生物醫(yī)學(xué)實驗室生物安全通則》進(jìn)行處理。

【參考文獻(xiàn)】

• Chaharaein B, Omar A R, Aini I, Yusoff K, Hassan S S. Detection of H5, H7 and H9 subtypes of avian influenza viruses by multiplex reverse transcription polymerase chain reaction. Microbiological Research, 2009, 164(2): 174-179.
• Chmielewski R, Swayne D E. Avian influenza: public health and food safety concerns. Annual Review of Food Science and Technology, 2011, 2:37-57.

【生產(chǎn)企業(yè)】

企業(yè)名稱：上海烜雅生物科技有限公司

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