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產(chǎn)品名稱:

豬瘟病毒/豬藍耳病病毒通用型(CSFV/PRRSV-U)熒光探針PCR核酸檢測試劑盒

產(chǎn)品型號: 產(chǎn)品時間: 2023-07-05
豬瘟豬藍耳CSFV/PRRSV-U熒光PCR檢測試劑盒根據(jù)豬瘟豬藍耳CSFV/PRRSV-U基因組設(shè)計特異性引物和探針,用熒光 PCR 技術(shù)對核酸進行體外擴增檢測,用于臨床上對可疑感染者的病原學(xué)診斷。本試劑盒適用于檢測分泌物、血液、脾臟、扁桃體、腎臟和淋巴結(jié)等樣本中的豬瘟豬藍耳CSFV/PRRSV-U。

產(chǎn)品概述

豬瘟豬藍耳CSFV/PRRSV-U熒光PCR檢測試劑盒說明書

【產(chǎn)品名稱】

通用名稱:豬瘟病毒/豬藍耳病病毒通用型(CSFV/PRRSV-U)?核酸檢測試劑盒(實時熒光-PCR法)

Name :Classical swine fever virus / porcine reproductive and respiratory syndrome virus (CSFV/PRRSV-U) nucleic acid detection kit (real-time fluorescence -PCR)?

【包裝規(guī)格】48T/盒

【預(yù)期用途】

豬瘟病毒/豬藍耳病病毒通用型(CSFV/PRRSV-U)?感染引起的豬急性、熱性、高度接觸性傳染病。其特征為高熱,網(wǎng)狀內(nèi)皮系統(tǒng)出血,死亡率高。家養(yǎng)豬和野豬都可以被感染,而且不分品種和年齡。

本試劑盒適用于檢測分泌物、血液、脾臟、扁桃體、腎臟和淋巴結(jié)等樣本中的豬瘟病毒/豬藍耳病病毒通用型(CSFV/PRRSV-U)?,用于豬瘟病毒/豬藍耳病病毒通用型(CSFV/PRRSV-U)?感染的輔助診斷。

【檢驗原理】

本試劑盒根據(jù)豬瘟病毒/豬藍耳病病毒通用型(CSFV/PRRSV-U)??基因組設(shè)計特異性引物和探針,用熒光 PCR 技術(shù)對核酸進行體外擴增檢測,用于臨床上對可疑感染者的病原學(xué)診斷。

【試劑組成】

名 稱 規(guī) 格

核酸提取液 1.5mL×2 管

酶液 50μL×1 管

ASFV 反應(yīng)液 1.0mL×1 管

ASFV 陽性質(zhì)控品 50μL×1 管

陰性質(zhì)控品 250μL×1 管

注:

1)不同批號試劑不能混用。

2)試劑盒內(nèi)各試劑組份足夠包裝規(guī)格所標示的檢測次數(shù)。

【儲存條件及有效期】

-20℃±5℃,避光保存、運輸、反復(fù)凍融少于 7 次,有效期 12 個月。

【適用儀器】

ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。

【標本采集】

病死或撲殺豬,取分泌物、血液、脾臟、扁桃體、腎臟和淋巴結(jié)等

【保存和運輸】

上述標本短期內(nèi)可保存于-20℃,長期保存可置-70℃,但不能超過 6 個月,標本運送應(yīng)采用 2~8℃冰袋運輸,嚴禁反復(fù)凍融。

【使用方法】

1.樣品處理(樣本處理區(qū))

1.1樣本前處理

組織樣品:每份組織分別從 3 個不同的位置稱取樣品約 1g,手術(shù)剪剪碎混勻后取

0.5g 于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)研磨,待勻漿后轉(zhuǎn)至 1.5mL 滅菌離心管中,8000rpm 離心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中;全血樣本:待血凝固后,取血清 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中。

1.2DNA 提取

1)對上述處理好的標本加入 50μL 核酸提取液,100℃恒溫處理 10min,13,000

rpm 離心 5min,取上清液轉(zhuǎn)移至新的 1.5mL EP 管,-20℃保存;

2)DNA 的提取也可以采用上海晅科生物科技有限公司生產(chǎn)的 DNA 提取試劑盒

(離心柱提取法),請嚴格按照試劑盒說明書進行操作。

2.試劑配制(試劑準備區(qū))

根據(jù)待檢測樣本總數(shù),設(shè)所需要的 PCR 反應(yīng)管管數(shù)為 N(N=樣本數(shù)+1 管陰性對照+1 管陽性對照;樣品每滿 7 份,多配制 1 份),每測試反應(yīng)體系配制如下表:

試劑 ASFV 反應(yīng)液 酶液

用量(樣本數(shù)為 N) 20μL 1μL

將混合好的測試反應(yīng)液分裝到 PCR 反應(yīng)管中,21uL/管。

3.加樣(樣本處理區(qū))

 

將步驟 1 提取的 DNA、陽性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取 4μL,分別加入相應(yīng)的反應(yīng)管中,蓋好管蓋,混勻,短暫離心。

4.PCR 擴增(核酸擴增區(qū))

4.1將待檢測反應(yīng)管置于熒光定量 PCR 儀反應(yīng)槽內(nèi);

4.2設(shè)置好通道、樣品信息,反應(yīng)體系設(shè)置為 25μL;

熒光通道選擇: 檢測通道(Reporter Dye)FAM, 淬滅通道(Quencher Dye)

NONE,ABI 系列儀器請勿選擇 ROX 參比熒光,選擇 None 即可。

4.3推薦循環(huán)參數(shù)設(shè)置:

步驟 循環(huán)數(shù) 溫度 時間 收集熒光信號

1 1 cycle 95℃ 10min 否

2 40 cycles 94℃ 15sec 否

55℃ 30sec 是

5.結(jié)果分析判定

5.1結(jié)果分析條件設(shè)定

設(shè)置 Baseline 和 Threshold:一般直接按機器自動分析的結(jié)果分析,當曲線出現(xiàn)整體傾斜時,根據(jù)分析后圖像調(diào)節(jié) Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內(nèi)調(diào)節(jié))、stop 值(一般可在 5~20 范圍內(nèi)調(diào)節(jié)),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動閾值線至高于陰性對照),重新分析結(jié)果。

5.2結(jié)果判斷

陽性:檢測通道 Ct 值≤35.0,且曲線有明顯的指數(shù)增長曲線。

可疑:檢測通道 Ct 值>35.0,且出現(xiàn)明顯擴增曲線的樣本建議重復(fù)試驗,重復(fù)試驗結(jié)果出現(xiàn) Ct 值≤35.0 和明顯擴增曲線者為陽性,否則為陰性。

陰性:樣本檢測結(jié)果無 Ct 值且無明顯的擴增曲線。

6.檢測方法的局限性

樣本檢測結(jié)果不樣本收集、處理、運送以及保存質(zhì)量有關(guān);

樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現(xiàn)假陽性結(jié)果;

陽性對照、擴增產(chǎn)物泄漏,會導(dǎo)致假陽性結(jié)果;

病原體在流行過程中基因突變、重組,會導(dǎo)致假陰性結(jié)果;

不同的提取方法存在提取效率差異,會導(dǎo)致假陰性結(jié)果;

試劑運輸,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現(xiàn)假陰性或定量檢測不準確的結(jié)果;

本檢測結(jié)果僅供參考,如須確診請結(jié)合臨床癥狀以及其他檢測手段。

7.質(zhì)控標準

陰性質(zhì)控品:無明顯擴增曲線或無 Ct 值顯示;

陽性質(zhì)控品:擴增曲線有明顯指數(shù)生長期,且 Ct 值≤32; 以上條件應(yīng)同時滿足,否則實驗視為無效。

【注意事項】

所有操作嚴格按照說明書進行;

試劑盒內(nèi)各種組分使用前應(yīng)自然融化,*混勻幵短暫離心;

反應(yīng)液應(yīng)避光保存;

反應(yīng)中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;

使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)與用工作服;

樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進行,以免交叉污染;

實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器;

試劑盒里所有物品應(yīng)視為污染物對待,幵按照《微生物生物醫(yī)學(xué)實驗室生物安全通則》進行處理。

【參考文獻】

[1]國家質(zhì)量監(jiān)督檢驗檢疫總局. SN/T 1559-2010 非洲豬瘟檢疫技術(shù)規(guī)范[S].

[2]黃萍, 肖家勇, 歐陽振宇. 非洲豬瘟病毒實時熒光定量 PCR 檢測方法的建立[S]. 中國動物檢疫, 2010.

[3]董志珍, 侯艷梅, 趙祥平. 非洲豬瘟病毒實時熒光定量 PCR 檢測方法的建立[S]. 中國獸醫(yī)雜志, 2009.

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